##plugins.themes.huaf_theme.article.main##
Tóm tắt
Nghiên cứu này nhằm sàng lọc các chủng Streptomyces có khả năng sinh chitinase và xác định các điều kiện nuôi cấy ảnh hưởng đến khả năng sinh enzyme của chủng có tiềm năng cao nhất. 24 chủng Streptomyces được đánh giá khả năng sinh chitinase thông qua đường kính vòng phân giải chitin dạng keo (colloidal chitin, CC). Chủng có hoạt tính mạnh nhất được định danh dựa trên trình tự gen 16S rRNA và phân tích cây phát sinh loài. Các yếu tố ảnh hưởng đến khả năng sinh chitinase được khảo sát gồm nồng độ CC ban đầu (0–3,5%, bước nhảy 0,5%), pH (4–9), nhiệt độ nuôi cấy (30, 35 và 40°C) và thời gian nuôi cấy (0–144 giờ, cách nhau 12 giờ). Dịch enzyme thô được thu nhận bằng cách ly tâm canh trường (5000 vòng/phút, 4°C trong 10 phút) nhằm loại bỏ tế bào. Hoạt độ chitinase trong dịch nổi được xác định bằng phương pháp so màu sử dụng thuốc thử 3,5-dinitrosalicylic acid (DNS) tại bước sóng 540 nm. Kết quả sàng lọc cho thấy, có 19/24 chủng thể hiện hoạt tính chitinase, trong đó chủng N2R3 có hoạt tính lớn nhất (16,3 mm). Kết quả phân tích trình tự gen xác định chủng này thuộc loài Streptomyces malaysiense. Hoạt độ chitinase đạt cực đại 3,33 U/mL tại 3% CC, pH 8, 30°C sau 84 giờ nuôi cấy. S. malaysiense N2R3 cho thấy tiềm năng ứng dụng chitinase trong xử lý phế phụ phẩm chứa chitin.
##plugins.themes.huaf_theme.article.details##
Cách trích dẫn
Trương Thị Thúy Hằng, Đỗ Hoài Thương, Nguyễn Thị Như Ý, Huỳnh Kim Thuyết, Nguyễn Thị Thanh Lan, & Nguyễn Thị Thủy Tiên. (2026). Tuyển chọn và khảo sát điều kiện nuôi cấy chủng Streptomyces có khả năng sinh Chitinase cao. Tạp Chí điện tử Khoa học Và công nghệ nông nghiệp, 10(1), 5425–5436. https://doi.org/10.46826/huaf-jasat.v10n1y2026.1345
Chuyên mục
THỰC PHẨM - KỸ THUẬT - CÔNG NGHỆ
Bản quyền @ 2017-2026 bởi Tạp chí điện tử Khoa học và công nghệ nông nghiệp
Tài liệu tham khảo
Nguyễn Thị Thanh Mai, Nguyễn Thị Thu, Trần Văn Tuấn, Phạm Hồng Hiển và Nguyễn Xuân Cảnh. (2023). Khảo sát một số đặc điểm sinh học của chủng xạ khuẩn Streptomyces diastatochromogenes VNUA27 sử dụng trong kiểm soát nấm bệnh hại cây chuối. Bản B của Tạp chí Khoa học và Công nghệ Việt Nam, 65(5), 59-63.
Đỗ Thị Tú Oanh, Huỳnh Nguyễn Tố Uyên, Nguyễn Thị Huyền và Trần Minh Định. (2023). Sàng lọc và tuyển chọn xạ khuẩn sinh tổng hợp chitinase được phân lập từ đất ở Vườn Quốc gia Yok Dôn. Tạp chí Khoa học Tây Nguyên, 17(59), 91-98.
Barka, E.A., Vatsa, P., Sanchez, L., Gaveau-Vaillant, N., Jacquard, C., Klenk, H., Clément, C., Ouhdouch, Y., & Van Wezel, G. P. (2016). Taxonomy, physiology, and natural products of Actinobacteria. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 80(1), 1-43. https//doi.org/10.1128/MMBR.00019-15
Ekundayo, F. O., Folorunsho, A. E., Ibisanmi, T. A., & Olabanji, O. B. (2022). Antifungal activity of chitinase produced by Streptomyces species isolated from grassland soils in Futa Area, Akure. Bulletin of the National Research Centre, 46(1), 1-14. https//doi.org/10.1186/s42269-022-00782-4
Gonfa, G. T., Negessa, K. A., Bulto, A. O. (2023). Isolation, screening, and identification of chitinase-producing bacterial strains from riverbank soils at Ambo, Western Ethiopia, Heliyon, 9(11), e21643. https//doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e21643
Halim, Y., Fransiska, Hardoko, & Handayani, R. (2020). Production of N-acetylglucosamine from shrimp shells’ chitin using intracellular chitinase from Mucor circinelloides. Food Research, 4 (5).1582–1587. https//doi.org/10.26656/fr.2017.4(5).135
Jha, S., Modi, H. A., & Jha, C. K. (2016). Characterization of extracellular chitinase produced from Streptomyces rubiginosus isolated from rhizosphere of Gossypium sp. Cogent Food and Agriculture, 2(1), 1198225. https//doi.org/10.1080/23311932.2016.1198225
Kotb, E., Alabdalall, A. H., Alghamdi, A. I., Ababutain, I. M., Aldakeel, S. A., Al-Zuwaid, S. K., Algarudi, B. M., Algarudi, S. M., Ahmed, A. A., & Albarrag, A. M. (2023). Screening for chitin-degrading bacteria in the environment of Saudi Arabia and characterization of the most potent chitinase from Streptomyces variabilis Am1. Scientific Reports, 13(1), 11723. https//doi.org/10.1038/s41598-023-38876-2
Lv, J., Lv, X., Ma, M., Oh, D.-H., Jiang, Z., & Fu, X. (2023). Chitin and chitin-based biomaterials: A review of advances in processing and food applications. Carbohydrate Polymers, 299, 120142. https//doi.org/10.1016/j.carbpol.2022.120142
Meriem, G., & Mahmoud, K. (2017). Optimization of chitinase production by a new Streptomyces griseorubens C9 isolate using response surface methodology. Annals of Microbiology, 67(2), 175–183. https//doi.org/10.1007/s13213-016-1249-8
Narayana, K. J. P., & Vijayalakshmi, M. (2009). Chitinase production by Streptomyces sp. ANU 6277. Brazilian Journal of Microbiology, 40, 725–733. https//doi.org/10.1590/S1517-83822009000400002
Pramesti, E., & Puspita, I. D. (2020). Optimization of colloidal chitin and inoculum concentration in chitinase production by Streptomyces sp. PB2 using response surface methodology. E3S Web of Conferences, 147, 03011. https//doi.org/ 10.1051/e3sconf/202014703011
Saadoun, I., Al-Omari, R., Jaradat, Z., & Ababneh, Q. (2009). Influence of culture conditions of Streptomyces sp. (strain S242) on chitinase production. Polish Journal of Microbiology, 58(4), 339–345.
Ser, H. L., Palanisamy, U. D., Yin, W. F., Chan, K. G., Goh, B. H., Lee, L. H. (2016). Streptomyces malaysiense sp. nov.: A novel Malaysian mangrove soil actinobacterium with antioxidative activity and cytotoxic potential against human cancer cell lines. Scientific Report, 13(6),24247. https//doi.org/10.1038/srep24247
Shivalee, A., Divatar, M., Sandhya, G., Ahmed, S., & Lingappa, K. (2016). Isolation and screening of soil microbes for extracellular chitinase activity. Journal of Advanced Scientific Research, 7(2), 10-14.
Shivalee, A., Lingappa, K., & Mahesh, D. (2018). Influence of bioprocess variables on the production of extracellular chitinase under submerged fermentation by Streptomyces pratensis strain KLSL55. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 16(2), 421–426. https//doi.org/10.1016/j.jgeb.2017.12.006
Brzezinska, S.M., Jankiewicz, U., & Lisiecki, K. (2013). Optimization of cultural conditions for the production of antifungal chitinase by Streptomyces sporovirgulis. Applied Biochemistry and Microbiology, 49(2),154–159. https//doi.org/10.1134/S0003683813020014
Thakur, D., Chauhan, A., Jhilta, P., Kaushal, R., & Dipta, B. (2023). Microbial chitinases and their relevance in various industries. Folia Microbiologica, 68(1), 29–53. https//doi.org/10.1007/s12223-022-00999-w
Đỗ Thị Tú Oanh, Huỳnh Nguyễn Tố Uyên, Nguyễn Thị Huyền và Trần Minh Định. (2023). Sàng lọc và tuyển chọn xạ khuẩn sinh tổng hợp chitinase được phân lập từ đất ở Vườn Quốc gia Yok Dôn. Tạp chí Khoa học Tây Nguyên, 17(59), 91-98.
Barka, E.A., Vatsa, P., Sanchez, L., Gaveau-Vaillant, N., Jacquard, C., Klenk, H., Clément, C., Ouhdouch, Y., & Van Wezel, G. P. (2016). Taxonomy, physiology, and natural products of Actinobacteria. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 80(1), 1-43. https//doi.org/10.1128/MMBR.00019-15
Ekundayo, F. O., Folorunsho, A. E., Ibisanmi, T. A., & Olabanji, O. B. (2022). Antifungal activity of chitinase produced by Streptomyces species isolated from grassland soils in Futa Area, Akure. Bulletin of the National Research Centre, 46(1), 1-14. https//doi.org/10.1186/s42269-022-00782-4
Gonfa, G. T., Negessa, K. A., Bulto, A. O. (2023). Isolation, screening, and identification of chitinase-producing bacterial strains from riverbank soils at Ambo, Western Ethiopia, Heliyon, 9(11), e21643. https//doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e21643
Halim, Y., Fransiska, Hardoko, & Handayani, R. (2020). Production of N-acetylglucosamine from shrimp shells’ chitin using intracellular chitinase from Mucor circinelloides. Food Research, 4 (5).1582–1587. https//doi.org/10.26656/fr.2017.4(5).135
Jha, S., Modi, H. A., & Jha, C. K. (2016). Characterization of extracellular chitinase produced from Streptomyces rubiginosus isolated from rhizosphere of Gossypium sp. Cogent Food and Agriculture, 2(1), 1198225. https//doi.org/10.1080/23311932.2016.1198225
Kotb, E., Alabdalall, A. H., Alghamdi, A. I., Ababutain, I. M., Aldakeel, S. A., Al-Zuwaid, S. K., Algarudi, B. M., Algarudi, S. M., Ahmed, A. A., & Albarrag, A. M. (2023). Screening for chitin-degrading bacteria in the environment of Saudi Arabia and characterization of the most potent chitinase from Streptomyces variabilis Am1. Scientific Reports, 13(1), 11723. https//doi.org/10.1038/s41598-023-38876-2
Lv, J., Lv, X., Ma, M., Oh, D.-H., Jiang, Z., & Fu, X. (2023). Chitin and chitin-based biomaterials: A review of advances in processing and food applications. Carbohydrate Polymers, 299, 120142. https//doi.org/10.1016/j.carbpol.2022.120142
Meriem, G., & Mahmoud, K. (2017). Optimization of chitinase production by a new Streptomyces griseorubens C9 isolate using response surface methodology. Annals of Microbiology, 67(2), 175–183. https//doi.org/10.1007/s13213-016-1249-8
Narayana, K. J. P., & Vijayalakshmi, M. (2009). Chitinase production by Streptomyces sp. ANU 6277. Brazilian Journal of Microbiology, 40, 725–733. https//doi.org/10.1590/S1517-83822009000400002
Pramesti, E., & Puspita, I. D. (2020). Optimization of colloidal chitin and inoculum concentration in chitinase production by Streptomyces sp. PB2 using response surface methodology. E3S Web of Conferences, 147, 03011. https//doi.org/ 10.1051/e3sconf/202014703011
Saadoun, I., Al-Omari, R., Jaradat, Z., & Ababneh, Q. (2009). Influence of culture conditions of Streptomyces sp. (strain S242) on chitinase production. Polish Journal of Microbiology, 58(4), 339–345.
Ser, H. L., Palanisamy, U. D., Yin, W. F., Chan, K. G., Goh, B. H., Lee, L. H. (2016). Streptomyces malaysiense sp. nov.: A novel Malaysian mangrove soil actinobacterium with antioxidative activity and cytotoxic potential against human cancer cell lines. Scientific Report, 13(6),24247. https//doi.org/10.1038/srep24247
Shivalee, A., Divatar, M., Sandhya, G., Ahmed, S., & Lingappa, K. (2016). Isolation and screening of soil microbes for extracellular chitinase activity. Journal of Advanced Scientific Research, 7(2), 10-14.
Shivalee, A., Lingappa, K., & Mahesh, D. (2018). Influence of bioprocess variables on the production of extracellular chitinase under submerged fermentation by Streptomyces pratensis strain KLSL55. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 16(2), 421–426. https//doi.org/10.1016/j.jgeb.2017.12.006
Brzezinska, S.M., Jankiewicz, U., & Lisiecki, K. (2013). Optimization of cultural conditions for the production of antifungal chitinase by Streptomyces sporovirgulis. Applied Biochemistry and Microbiology, 49(2),154–159. https//doi.org/10.1134/S0003683813020014
Thakur, D., Chauhan, A., Jhilta, P., Kaushal, R., & Dipta, B. (2023). Microbial chitinases and their relevance in various industries. Folia Microbiologica, 68(1), 29–53. https//doi.org/10.1007/s12223-022-00999-w