##plugins.themes.huaf_theme.article.main##
Tóm tắt
Tảo silic được sử dụng rộng rãi làm thức ăn trong nuôi trồng thủy sản, đặc biệt là ở giai đoạn ấu trùng của tôm, cá và các loài nhuyễn thể. Trong nghiên cứu này, một số loài tảo silic đã phân lập từ các vùng ven biển Thành phố Huế, với mục tiêu ứng dụng trong xử lý nước thải và nuôi trồng thủy sản. Mẫu tảo được thu thập từ rừng ngập mặn Rú Chá phường Hóa Châu, khu vực phá Tam Giang ở xã Vinh Lộc, phường Thuận An và xã Chân Mây - Lăng Cô. Kết quả đã phân lập được 9 chủng tảo silic thuộc 4 chi Navicula, Nitzschia, Cylindrotheca và Odontella. Hình thái và đặc điểm đặc trưng của các chủng tảo được mô tả, phân biệt qua kính hiển vi quang học bằng phương pháp so sánh hình thái. Khảo sát tăng trưởng cho thấy chủng PHN7 (Navicula sp.) và chủng RCN1 (Nitzschia longissima), được đánh giá cao về khả năng gia tăng mật độ mạnh trong môi trường nuôi cấy F/2 độ mặn 25‰. Trong khi chủng TA1N5 (Navicula ramosissima) được đánh giá bởi khả năng tạo màng sinh học. Kết quả góp phần mở ra tiềm năng trong việc sử dụng các giống tảo bản địa phục vụ cho nuôi trồng và xử lý nước thải thủy sản.
##plugins.themes.huaf_theme.article.details##
Cách trích dẫn
Nguyễn Anh Tuấn, Nguyễn Văn Huệ, Nguyễn Thị Thanh Thủy, Võ Điều, Nguyễn Tử Minh, & Hồ Thị Thu Hoài. (2026). Đặc điểm của một số loài tảo silic tiềm năng trong xử lý nước thải và nuôi trồng thủy sản phân lập từ vùng ven biển Thành phố Huế. Tạp Chí điện tử Khoa học Và công nghệ nông nghiệp, 10(2), 5592–5604. https://doi.org/10.46826/huaf-jasat.v10n2y2026.1376
Chuyên mục
CHĂN NUÔI - THÚ Y- THỦY SẢN - ĐỘNG VẬT
Bản quyền @ 2017-2026 bởi Tạp chí điện tử Khoa học và công nghệ nông nghiệp
Tài liệu tham khảo
Đỗ Phương Chi, Đinh Tiến Dũng, Vũ Phạm Thái và Nguyễn Thị Thu Hà. (2020). Bước đầu sử dụng tảo bám xử lý nước thải sinh hoạt và nước thải chăn nuôi, Tạp chí khoa học và Công nghệ Việt Nam, 1(110), 84–90.
Nguyễn Thanh Mai, Trịnh Hoàng Khải, Đào Văn Trí và Nguyễn Văn Hùng. (2009). Nghiên cứu phân lập, nuôi cấy in vitro tảo silic nước mặn Chaetoceros calcitrans Paulsen, 1905 và ứng dụng sinh khối tảo làm thức ăn cho tôm he chân trắng. Tạp chí Phát triển, Khoa học và Công nghệ, 2(13), 28-36.
Nguyễn, Thị Thu Liên, Nguyễn Hồng Sơn, Hoàng Tấn Quảng và Lê Thị Tuyết Nhân. (2018). Phân lập và tuyển chọn một số chủng tảo silic Skeletonema costatum từ vùng biển Thừa Thiên Huế để làm thức ăn nuôi trồng thủy sản. Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Nông nghiệp và Phát triển nông thôn, 126(5), 45–52.
Tôn Thất Pháp, Lương Quang Đốc, Mai Văn Phô, Lê Thị Trễ, Phan Thị Thúy Hằng, Nguyễn Văn Hoàng, Võ Văn Dũng, Hoàng Công Tín, Trương Thị Hiếu Thảo. (2009). Đa dạng sinh học ở phá Tam Giang - Cầu Hai tỉnh Thừa Thiên Huế. Nhà xuất bản Đại học Huế.
Agence Française de Sécurité Sanitaire des Aliments. (2002). Avis de l’Agence Française de Sécurité Sanitaire des Aliments relatif à la demande d’évaluation de la démonstration de l’équivalence en substance d’une microalgue Odontella aurita avec des algues autorisées (AFSSA Saisine no. 2001-SA-0082). Retreived from https://www.anses.fr/fr/system/files/AAAT2001sa0082.pdf
Almeyda, M. D., Scodelaro Bilbao, P. G., Popovich, C. A., Constenla, D. T., & Leonardi, P. I. (2020). Enhancement of polyunsaturated fatty acid production under low-temperature stress in Cylindrotheca closterium. Journal of Applied Phycology, 32, 989–1001. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-020-02047-x.
An, S. M., Cho, K., Kim, E. S., Ki, H., Choi, G., & Kang, N. S. (2023). Description and characterization of Odontella aurita OAOSH22, a marine diatom rich in eicosapentaenoic acid and fucoxanthin, isolated from Osan Harbor, Korea. Marine Drugs, 21(11), 563. DOI: https://doi.org/10.3390/md21110563
An, S. M., Choi, D. H., Lee, J. H., Lee, H., & Noh, J. H. (2017). Identification of benthic diatoms isolated from the eastern tidal flats of the Yellow Sea: Comparison between morphological and molecular approaches. PLoS ONE, 12(6), e0179422. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0179422.
Andersen, R. A., & Kawachi, M. (2005). Traditional microalgae isolation techniques. In R. A. Andersen (Ed.), Algal culturing techniques (pp. 83–100). Elsevier Academic Press.
Araújo-Castro, A. M. V., & Souza-Santos, L. P. (2005). Are the diatoms Navicula sp. and Thalassiosira fluviatilis suitable to be fed to the benthic harpacticoid copepod Tisbe biminiensis? Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 327(1), 58–69. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jembe.2005.06.005
Campos, C. V., Mota, G. C., de Lima, P. C., de Abreu, J. L., da Silva, S. M., Oliveira, C. Y., Brandão, B. D., de Macêdo Dantas, D. M., de Andrade, T. P., & Gálvez, A. O. (2025). The use of Haematococcus pluvialis bioencapsulated by the water flea Daphnia magna increases growth performance, nutritional content, and immunological response of Pacific white shrimp Penaeus vannamei during the nursery phase. Journal of Applied Phycology, 37, 1871–1886. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-025-03306-8.
Courtois de Viçose, G., Porta, A., Viera, M. P., Fernández-Palacios, H., & Izquierdo, M. (2012). Effects of density on growth rates of four benthic diatoms and variations in biochemical composition associated with growth phase. Journal of Applied Phycology, 24, 1427–1437. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-012-9799-z
Daume, S., Brand-Gardner, S., & Woelkering, W. J. (1999). Preferential settlement of abalone larvae: Diatom films vs. non-geniculate coralline red algae. Aquaculture, 174, 243–254.
Dobretsov, S., & Rittschof, D. (2020). Love at first taste: Induction of larval settlement by marine microbes. International Journal of Molecular Sciences, 21(3), 731. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21030731
Gomes, A., Lourenço, S., Santos, P. M., Raposo, A., & Pombo, A. (2021). Effects of single and mixed-diatom diets on growth, condition, and survival of larvae of the sea urchin Paracentrotus lividus. Aquaculture International, 29, 1069–1090. DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-020-00656-0
Guillard, R. R. L. (1975). Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. In W. L. Smith & M. H. Chanley (Eds.), Culture of marine invertebrate animals (pp. 29–60). Plenum Press.
Guillard, R. R. L., & Ryther, J. H. (1962). Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea Cleve. Canadian Journal of Microbiology, 8(2), 229–239.
Karlson, B., Cusack, C., & Bresnan, E. (Eds.). (2010). Microscopic and molecular methods for quantitative phytoplankton analysis (IOC Manuals and Guides No. 55). UNESCO.
Kawamura, T., Saido, T., Takami, H., & Yamashita, Y. (1995). Dietary value of benthic diatoms for the growth of postlarval abalone Haliotis discus hannai. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 194, 189–199.
Khatoon, H., Banerjee, S., Yusoff, F. M., & Shariff, M. (2009). Evaluation of indigenous marine periphytic Amphora, Navicula and Cymbella grown on substrate as feed supplement in Penaeus monodon postlarval hatchery system. Aquaculture Nutrition, 15(2), 186–193. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2008.00582.x
Lebeau, T., & Robert, J.-M. (2003). Diatom cultivation and biotechnologically relevant products. Part I: Cultivation at various scales. Applied Microbiology and Biotechnology, 60, 612–623. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253-002-1176-4
Li, X. L., Marella, T. K., Tao, L., Peng, L., Song, C. F., Dai, L. L., Tiwari, A., & Li, G. (2017). A novel growth method for diatom algae in aquaculture wastewater for natural food development and nutrient removal. Water Science and Technology, 75(12), 2777–2783. DOI: https://doi.org/10.2166/wst.2017.211
Moreno Osorio, J. H., Pollio, A., Frunzo, L., Lens, P. N. L., & Esposito, G. (2021). A review of microalgal biofilm technologies: Definition, applications, settings and analysis. Frontiers in Chemical Engineering, 3, 737710. DOI: https://doi.org/10.3389/fceng.2021.737710
Nnaceri, H., Ishika, T., Mkpuma, V. O., & Moheimani, N. R. (2023). Microalgal biofilms: Towards a sustainable biomass production. Algal Research, 72, 103124. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-014-0489-x
Nurachman, Z., Brataningtyas, D. S., Hartati, et al. (2012). Oil from the tropical marine benthic-diatom Navicula sp. Applied Biochemistry and Biotechnology, 168, 1065–1075.
Roerts, R. D., Kawamura, T., & Nicholson, C. M. (1999). Growth and survival of postlarval abalone (Haliotis iris) in relation to development and diatom diet. Journal of Shellfish Research, 18(1), 243–250.
Saini, S., Tewari, S., Dwivedi, J., & Sharma, V. (2023). Biofilm-mediated wastewater treatment: A comprehensive review. Materials Advances, 4(6), 1415–1443. DOI: https://doi.org/10.1039/d2ma00945e
Sánchez-Saavedra, M. D. P., & Núñez-Zarco, E. (2015). Growth of red abalone (Haliotis rufescens) fed cold-stored benthic diatoms. Journal of the World Aquaculture Society, 46, 210–218.
Scholz, B., & Liebezeit, G. (2013). Biochemical characterisation and fatty acid profiles of 25 benthic marine diatoms isolated from the Solthörn tidal flat (southern North Sea). Journal of Applied Phycology, 25, 453–465. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-012-9879-0
Takami, H., & Kawamura, T. (2003). Dietary changes in the abalone Haliotis discus hannai and relationship with the development of the digestive organ. Aquaculture Research, 37(2), 89–98.
Watanabe, S., Kodama, M., Zarate, J. M., Lebata-Ramos, M. J. H., & Nievales, M. F. J. (2012). Ability of sandfish (Holothuria scabra) to utilise organic matter in black tiger shrimp ponds. In C. A. Hair, T. D. Pickering, & D. J. Mills (Eds.), Asia-Pacific tropical sea cucumber aquaculture (ACIAR Proceedings No. 136, pp. 113–120).
Xie, X., Zhao, W., Yang, M., Zhao, S., & Wei, J. (2017). Beneficial effects of benthic diatoms on growth and physiological performance in juvenile sea cucumber Apostichopus japonicus. Aquaculture International, 25, 287–302. DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-016-0028-7
Xing, R., Ma, W., Shao, Y., Cao, X., Su, C., Song, H., Su, Q., & Zhou, G. (2018). Growth and potential purification ability of Nitzschia sp. benthic diatoms in sea cucumber aquaculture wastewater. Aquaculture Research, 49(8), 2644–2652. DOI: https://doi.org/10.1111/are.13722
Yang, M., Xu, X. Y., Hu, H. W., Zhang, W. D., Ma, J. Y., Lei, H. P., Wang, Q. Z., Xie, X., & Gong, Z. (2023). Combined application of nitrogen, phosphorus, iron, and silicon improves growth and fatty acid composition in marine epiphytic diatoms. Frontiers in Marine Science, 10, 1292713. DOI: https://doi.org/10.3389/fmars.2023.1292713
Zhao, W., Yao, R., He, X.-S., Liao, Z.-H., Liu, Y.-T., Gao, B.-Y., Zhang, C.-W., & Niu, J. (2022). Beneficial contribution of the microalga Odontella aurita to the growth, immune response, antioxidant capacity, and hepatic health of juvenile golden pompano (Trachinotus ovatus). Aquaculture, 555, 738206. DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738206
Nguyễn Thanh Mai, Trịnh Hoàng Khải, Đào Văn Trí và Nguyễn Văn Hùng. (2009). Nghiên cứu phân lập, nuôi cấy in vitro tảo silic nước mặn Chaetoceros calcitrans Paulsen, 1905 và ứng dụng sinh khối tảo làm thức ăn cho tôm he chân trắng. Tạp chí Phát triển, Khoa học và Công nghệ, 2(13), 28-36.
Nguyễn, Thị Thu Liên, Nguyễn Hồng Sơn, Hoàng Tấn Quảng và Lê Thị Tuyết Nhân. (2018). Phân lập và tuyển chọn một số chủng tảo silic Skeletonema costatum từ vùng biển Thừa Thiên Huế để làm thức ăn nuôi trồng thủy sản. Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Nông nghiệp và Phát triển nông thôn, 126(5), 45–52.
Tôn Thất Pháp, Lương Quang Đốc, Mai Văn Phô, Lê Thị Trễ, Phan Thị Thúy Hằng, Nguyễn Văn Hoàng, Võ Văn Dũng, Hoàng Công Tín, Trương Thị Hiếu Thảo. (2009). Đa dạng sinh học ở phá Tam Giang - Cầu Hai tỉnh Thừa Thiên Huế. Nhà xuất bản Đại học Huế.
Agence Française de Sécurité Sanitaire des Aliments. (2002). Avis de l’Agence Française de Sécurité Sanitaire des Aliments relatif à la demande d’évaluation de la démonstration de l’équivalence en substance d’une microalgue Odontella aurita avec des algues autorisées (AFSSA Saisine no. 2001-SA-0082). Retreived from https://www.anses.fr/fr/system/files/AAAT2001sa0082.pdf
Almeyda, M. D., Scodelaro Bilbao, P. G., Popovich, C. A., Constenla, D. T., & Leonardi, P. I. (2020). Enhancement of polyunsaturated fatty acid production under low-temperature stress in Cylindrotheca closterium. Journal of Applied Phycology, 32, 989–1001. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-020-02047-x.
An, S. M., Cho, K., Kim, E. S., Ki, H., Choi, G., & Kang, N. S. (2023). Description and characterization of Odontella aurita OAOSH22, a marine diatom rich in eicosapentaenoic acid and fucoxanthin, isolated from Osan Harbor, Korea. Marine Drugs, 21(11), 563. DOI: https://doi.org/10.3390/md21110563
An, S. M., Choi, D. H., Lee, J. H., Lee, H., & Noh, J. H. (2017). Identification of benthic diatoms isolated from the eastern tidal flats of the Yellow Sea: Comparison between morphological and molecular approaches. PLoS ONE, 12(6), e0179422. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0179422.
Andersen, R. A., & Kawachi, M. (2005). Traditional microalgae isolation techniques. In R. A. Andersen (Ed.), Algal culturing techniques (pp. 83–100). Elsevier Academic Press.
Araújo-Castro, A. M. V., & Souza-Santos, L. P. (2005). Are the diatoms Navicula sp. and Thalassiosira fluviatilis suitable to be fed to the benthic harpacticoid copepod Tisbe biminiensis? Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 327(1), 58–69. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jembe.2005.06.005
Campos, C. V., Mota, G. C., de Lima, P. C., de Abreu, J. L., da Silva, S. M., Oliveira, C. Y., Brandão, B. D., de Macêdo Dantas, D. M., de Andrade, T. P., & Gálvez, A. O. (2025). The use of Haematococcus pluvialis bioencapsulated by the water flea Daphnia magna increases growth performance, nutritional content, and immunological response of Pacific white shrimp Penaeus vannamei during the nursery phase. Journal of Applied Phycology, 37, 1871–1886. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-025-03306-8.
Courtois de Viçose, G., Porta, A., Viera, M. P., Fernández-Palacios, H., & Izquierdo, M. (2012). Effects of density on growth rates of four benthic diatoms and variations in biochemical composition associated with growth phase. Journal of Applied Phycology, 24, 1427–1437. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-012-9799-z
Daume, S., Brand-Gardner, S., & Woelkering, W. J. (1999). Preferential settlement of abalone larvae: Diatom films vs. non-geniculate coralline red algae. Aquaculture, 174, 243–254.
Dobretsov, S., & Rittschof, D. (2020). Love at first taste: Induction of larval settlement by marine microbes. International Journal of Molecular Sciences, 21(3), 731. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21030731
Gomes, A., Lourenço, S., Santos, P. M., Raposo, A., & Pombo, A. (2021). Effects of single and mixed-diatom diets on growth, condition, and survival of larvae of the sea urchin Paracentrotus lividus. Aquaculture International, 29, 1069–1090. DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-020-00656-0
Guillard, R. R. L. (1975). Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates. In W. L. Smith & M. H. Chanley (Eds.), Culture of marine invertebrate animals (pp. 29–60). Plenum Press.
Guillard, R. R. L., & Ryther, J. H. (1962). Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea Cleve. Canadian Journal of Microbiology, 8(2), 229–239.
Karlson, B., Cusack, C., & Bresnan, E. (Eds.). (2010). Microscopic and molecular methods for quantitative phytoplankton analysis (IOC Manuals and Guides No. 55). UNESCO.
Kawamura, T., Saido, T., Takami, H., & Yamashita, Y. (1995). Dietary value of benthic diatoms for the growth of postlarval abalone Haliotis discus hannai. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 194, 189–199.
Khatoon, H., Banerjee, S., Yusoff, F. M., & Shariff, M. (2009). Evaluation of indigenous marine periphytic Amphora, Navicula and Cymbella grown on substrate as feed supplement in Penaeus monodon postlarval hatchery system. Aquaculture Nutrition, 15(2), 186–193. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2095.2008.00582.x
Lebeau, T., & Robert, J.-M. (2003). Diatom cultivation and biotechnologically relevant products. Part I: Cultivation at various scales. Applied Microbiology and Biotechnology, 60, 612–623. DOI: https://doi.org/10.1007/s00253-002-1176-4
Li, X. L., Marella, T. K., Tao, L., Peng, L., Song, C. F., Dai, L. L., Tiwari, A., & Li, G. (2017). A novel growth method for diatom algae in aquaculture wastewater for natural food development and nutrient removal. Water Science and Technology, 75(12), 2777–2783. DOI: https://doi.org/10.2166/wst.2017.211
Moreno Osorio, J. H., Pollio, A., Frunzo, L., Lens, P. N. L., & Esposito, G. (2021). A review of microalgal biofilm technologies: Definition, applications, settings and analysis. Frontiers in Chemical Engineering, 3, 737710. DOI: https://doi.org/10.3389/fceng.2021.737710
Nnaceri, H., Ishika, T., Mkpuma, V. O., & Moheimani, N. R. (2023). Microalgal biofilms: Towards a sustainable biomass production. Algal Research, 72, 103124. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-014-0489-x
Nurachman, Z., Brataningtyas, D. S., Hartati, et al. (2012). Oil from the tropical marine benthic-diatom Navicula sp. Applied Biochemistry and Biotechnology, 168, 1065–1075.
Roerts, R. D., Kawamura, T., & Nicholson, C. M. (1999). Growth and survival of postlarval abalone (Haliotis iris) in relation to development and diatom diet. Journal of Shellfish Research, 18(1), 243–250.
Saini, S., Tewari, S., Dwivedi, J., & Sharma, V. (2023). Biofilm-mediated wastewater treatment: A comprehensive review. Materials Advances, 4(6), 1415–1443. DOI: https://doi.org/10.1039/d2ma00945e
Sánchez-Saavedra, M. D. P., & Núñez-Zarco, E. (2015). Growth of red abalone (Haliotis rufescens) fed cold-stored benthic diatoms. Journal of the World Aquaculture Society, 46, 210–218.
Scholz, B., & Liebezeit, G. (2013). Biochemical characterisation and fatty acid profiles of 25 benthic marine diatoms isolated from the Solthörn tidal flat (southern North Sea). Journal of Applied Phycology, 25, 453–465. DOI: https://doi.org/10.1007/s10811-012-9879-0
Takami, H., & Kawamura, T. (2003). Dietary changes in the abalone Haliotis discus hannai and relationship with the development of the digestive organ. Aquaculture Research, 37(2), 89–98.
Watanabe, S., Kodama, M., Zarate, J. M., Lebata-Ramos, M. J. H., & Nievales, M. F. J. (2012). Ability of sandfish (Holothuria scabra) to utilise organic matter in black tiger shrimp ponds. In C. A. Hair, T. D. Pickering, & D. J. Mills (Eds.), Asia-Pacific tropical sea cucumber aquaculture (ACIAR Proceedings No. 136, pp. 113–120).
Xie, X., Zhao, W., Yang, M., Zhao, S., & Wei, J. (2017). Beneficial effects of benthic diatoms on growth and physiological performance in juvenile sea cucumber Apostichopus japonicus. Aquaculture International, 25, 287–302. DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-016-0028-7
Xing, R., Ma, W., Shao, Y., Cao, X., Su, C., Song, H., Su, Q., & Zhou, G. (2018). Growth and potential purification ability of Nitzschia sp. benthic diatoms in sea cucumber aquaculture wastewater. Aquaculture Research, 49(8), 2644–2652. DOI: https://doi.org/10.1111/are.13722
Yang, M., Xu, X. Y., Hu, H. W., Zhang, W. D., Ma, J. Y., Lei, H. P., Wang, Q. Z., Xie, X., & Gong, Z. (2023). Combined application of nitrogen, phosphorus, iron, and silicon improves growth and fatty acid composition in marine epiphytic diatoms. Frontiers in Marine Science, 10, 1292713. DOI: https://doi.org/10.3389/fmars.2023.1292713
Zhao, W., Yao, R., He, X.-S., Liao, Z.-H., Liu, Y.-T., Gao, B.-Y., Zhang, C.-W., & Niu, J. (2022). Beneficial contribution of the microalga Odontella aurita to the growth, immune response, antioxidant capacity, and hepatic health of juvenile golden pompano (Trachinotus ovatus). Aquaculture, 555, 738206. DOI: https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2022.738206