##plugins.themes.huaf_theme.article.main##

Abstract

Curculigo orchioides Gaertn. contains phenolic compounds, lignans, triterpenoid saponins, flavones and sesquiterpenes that help prevent diseases such as cancer, osteoporosis, diabetes, and hypertension or treat some diseases such as asthma, leucorrhea, cold sperm, impotence, bones and joints, physical weakness, duodenal ulcers, diarrhea. Recently, the natural source of C. orchioides has been gradually depleted. In vitro propagation studies of C. orchioides have been conducted to address the shortage of planting materials, reduce production costs, and meet both domestic and export demands. The results on the effects of nanoAg and organic compounds in in vitro propagation showed that using 20% (v/v) nanoAg with 20 minutes of shaking achieved an aseptic survival rate of 81.6%, with 1.6% of explants inducing callus formation. The culture medium supplemented with 10% (v/v) coconut water, 10 g/L potato starch and 10 g/L banana powder exhibited the highest shoot formation efficiency with the results of 18.8 buds/sample, 5.44 leaves/plant, a height of 7.17 cm, a fresh weight of 7.67 g, and pigment contents of 0.422 mg/g chlorophyll a, 0.298 mg/g chlorophyll b.

##plugins.themes.huaf_theme.article.details##

How to Cite
Nguyen Dinh Sy, Duong Nguyen Phuong Dung, Nguyen Ngoc Huu, Tran Van Cuong, Tran Thi Phuong Hanh, Nguyen Van Minh, & Phan Xuan Huyen. (2025). Study on the effect of silver nanoparticles and organic compounds in in vitro shoot regeneration of Curculigo orchioides Gaertn. E-Journal of Agricultural Science and Technology, 9(3), 5064–5074. https://doi.org/10.46826/huaf-jasat.v9n3y2025.1240
Section
PLANTS - CROP SCIENCES

References

Đỗ Mạnh Cường, Trương Thị Bích Phượng và Dương Tấn Nhựt. (2018). Ảnh hưởng của nano bạc lên khả năng cảm ứng mô sẹo và tái sinh chồi từ mẫu lá cây dâu tây (Fragaria x ananassa) nuôi cấy in vitro. Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Khoa học Tự nhiên, 127(1C), 61-70. DOI:10.26459/hueuni-jns.v127i1C.4893.
Nguyễn Thị Lài, Phạm Hương Sơn, Bùi Thị Thanh Phương, Phạm Minh Duy, Đỗ Thị Thơm, Nguyễn Thị Bình và Nguyễn Ích Tân. (2018). Nghiên cứu nhân giống in vitro cây sâm cau (Curculigo orchioides Gaertn.) từ nuôi cấy đỉnh sinh trưởng. Tạp chí Khoa học và Công nghệ Việt Nam, 60(12), 50-55.
Dương Tấn Nhựt, Dương Bảo Trinh, Đỗ Mạnh Cường, Hoàng Thanh Tùng, Nguyễn Phúc Huy, Vũ Thị Hiền, Vũ Quốc Luận, Lê Thị Thu Hiền và Nguyễn Hoài Châu. (2018). Khảo sát nano bạc làm chất khử trùng mẫu mới trong nhân giống vô tính cây African violet (Saintpaulia Ionantha H. Wendl). Tạp chí Công nghệ Sinh học, 16(1), 87-97.
Trương Thị Bích Phượng, Đỗ Thị Hoa Thắm, Bùi Lê Thanh Nhàn và Nguyễn Đức Tuấn. (2018). Nghiên cứu tạo chồi in vitro cây sâm cau (Curculigo orchioides Gaertn.) ở Thừa thiên huế. Tạp chí Y dược học Trường đại học Y dược Huế, 1(8), 37-46.
Kong Inthachak Maitouy, Ienglorlath Dettaphone, Nguyễn Phương Quý, Trần Trung Kiên, Vũ Thị Xuân Quyên và Nguyễn Thị Mai Lan. (2022). Ảnh hưởng của chất hữu cơ bổ sung đến quá trình nhân nhanh chồi, đặc điểm hình thái, giải phẫu và hàm lượng sắc tố quang hợp loài lan hài chó đốm (Paphiopedilum bellatulum) trong nuôi cấy in vitro. Tạp chí Khoa học và Công nghệ Trường Đại học Hùng Vương, 26(1), 44-50.
Đinh Trường Sơn, Đặng Thu Hòa, Vũ Công Sơn, Nguyễn Thị Hoa, Vũ Thị Hiền và Đặng Thị Thanh Tâm. (2023). Đánh giá tác động của các chất hữu cơ đến giai đoạn nhân nhanh in vitro chuối tiêu Nam mỹ (Musa acuminate). Tạp chí Khoa học Nông nghiệp, 21(5), 597-604.
Nguyễn Tập. (2006). Danh lục đỏ cây thuốc Việt Nam. Tạp chí Dược liệu, 11(3), 97-105.
Nguyễn Tập. (2001). Áp dụng khung phân hạng mới của IUCN-1994 để đánh giá tình trạng bị đe dọa đối với các loài cây cần bảo tồn ở Việt Nam hiện nay. Tạp chí Dược liệu, 6(2+3), 42-45.
Nguyễn Duy Thuần và Nguyễn Thị Phương Lan. (2001). Bước đầu nghiên cứu cây sâm cau. Tạp chí Dược liệu, 6(6), 163-166.
Võ Châu Tuấn, Nguyễn Thị Út và Trần Quang Dần. (2011). Nhân giống invitro cây sâm cau (Curculigo orchioides Gaertn.) - Một loài cây thuốc quý. Tạp chí Khoa học và Công nghệ Đại học Đà Nẵng, 6(47), 163-169.
Avinash, P. (2013). Evaluation of effect of aqueous slurry of Curculigo orchioides Gaertn. rhizome in streptozotocin-induced diabetic rats. Journal of Pharmacy Research, 7(8), 747-753.
Bafna, A. R., & Mishra, S. H. (2006). Immunostimulatory effect of methanol extract of Curculigo orchioides on immunosuppressed mice. Journal of Ethnopharmacology, 104(1-2), 1-4.
Bhasker, J. (1996). Micropropagation of Phalaenopsis, Thrissur. Unpublished doctoral dissertation, Kerala Agricultural University.
Burnet, G., & Ibrahim, R. K. (1973). Tissue culture of Citrus peel and its potential for flavonoid synthesis, Zeitschriftfür Pflanzenphysiologie, 69, 152-162.
Chaloupka, K., Malam, Y. & Seifalian, A. M. (2010). Nanosilver as a new generation of nanoproduct in biomedical applications. Trends in Biotechnology, 28(11), 580-588.
Dhenuka, S., Balakrishna, P., & Anand, A. (1999). Indirect organogenesis from the leaf explants of medicinally important plant Curculigo orchioides Gaertn. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 8, 113-115.
George, E. F., Hall, M. A., & De Klerk, G. J. (2008). Plant Propagation by Tissue Culture. Springer, Dordrecht, the Netherlands 1, 501.
He, Y., Dong, X., Jia, X., Li, M., Yuan, T., Xu, H., Qin, L., Han, T., & Zhang, Q. (2015). Qualitative and quantitative analysis on chemical constituents from Curculigo orchioides using ultra high performance liquid chromatography coupled with electrospray ionization quadrupole time-of-flight tandem mass spectrometry. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 102, 236-245.
Jean, W. H., Yong., Liya G., Yan, F. N., & Swee, N. T. (2009). The Chemical Composition and Biological Properties of Coconut (Cocos nucifera L.) Water. Molecules, 14, 5144-5164.
Murali, V. P., & Kuttan, G. (2016). Curculigoside augments cell-mediated immune responses in metastatic tumor-bearing animals. Immunopharmacol Immunotoxicol, 38(4), 264-269.
Nagesh, K. S., & Shanthamma, C. (2016). An overview on tissue culture studies of Curculigo orchioides Gaertn: an endangered multipotential medicinal herb. Journal of Medicinal Plants Studies, 4(4), 119-123.
Overbeek, J. V., Conklin, M. E., & Blakeslee, A. F. (1941). Factors in coconut milk essential for growth and development of very young Datura embryos. Science, 94, 350–351.
Rao, K. S. & Mishra, S. H. (1996). Effect of rhizomes of Curculigo orchioides Gaertn. on drug induce hepatoxicity. Indian Drugs, 33(9), 458-461.
Saranjeet, K., & Bhutani, K. K. (2012). Organic growth supplement stimulants for in vitro multiplication of Cymbidium pendulum, HortScience, 9(1), 47-52.
Singh, R., & Gupta, A. K. (2008). Antimicrobial and antitumor activity of the fractionated extracts of Kalimussli (Curculigo orchioides). International Journal Green Pharmacy, 2, 34-36
Shantz, E. M., & Steward, F. C. (1952). Coconut milk factor: The growth promoting substance in coconut milk. Journal of the American Chemical Society, 74, 6133-6135.
Thakur, M., & Dixit, V.K. (2007). Effect of some Vajikaran herbs on pendiculation activities and in vitro sperm count in male. Sexuality and Disability, 25(4), 203-207.
Wu, Q., Fu, D. X., Hou, A. J., Lei, G. Q., Liu, Z. J., Chen, J. K., & Zhoue, T. S. (2005). Antioxidative phenols and phenolic glycosides from Curculigo orchioides. Chemical and Pharmaceutical Bulletin, 53(8), 1065-1067.
Yong, J. W. H., Ge, L., Ng, Y. F., & Tan, S. N. (2009). The chemical composition abd biology properties of coconut (Cocos nucifera L.) water. Molecules, 14, 5144-5164.