##plugins.themes.huaf_theme.article.main##
Tóm tắt
Trong mô hình nuôi thâm canh cá rô phi lồng bè với mật độ cao có thể làm động vật thủy sản tiết ra các stress hormone (catecholamine) như norepinephrine, epinephrine và dopamine. Nhiều nghiên cứu đã khẳng định sự có mặt của các hormone này có thể kích thích sự phát triển và độc lực của vi khuẩn gây bệnh. Do vậy, mục đích của nghiên cứu này là đánh giá sự ảnh hưởng của stress hormone dopamine lên độc lực của vi khuẩn S. agalactiae trên cá rô phi, với hai thí nghiệm chính: (1) thí nghiệm bổ sung dopamine vào môi trường nuôi cấy nhằm đánh giá hoạt động thủy phân của các enzyme và sự hình thành màng sinh học biofilm trong điều kiện in vitro và (2) thí nghiệm cảm nhiễm cá rô phi với S. agalactiae được nuôi trong cấy trong điều kiện có hoặc không bổ sung dopamine. Kết quả thí nghiệm in vitro cho thấy bổ sung dopamine ở các nồng độ 50, 100 và 200 µM đã tăng cường khả năng hình thành màng sinh học biofilm, đồng thời hoạt động các enzyme lipase, phospholipase và haemolysin được nâng cao nhưng làm giảm sự thủy phân của enzyme caseinase ở vi khuẩn S. agalactiae. Thí nghiệm cảm nhiễm cá rô phi với vi khuẩn S. agalactiae nuôi cấy trong môi trường bổ sung dopamine nồng độ 50 µM, làm tăng tỷ lệ chết của cá rô phi thí nghiệm so với các nghiệm thức đối chứng.
##plugins.themes.huaf_theme.article.details##
Cách trích dẫn
Nguyễn Đức Quỳnh Anh, Nguyễn Nam Quang, Nguyễn Thị Huế Linh, Nguyễn Thị Xuân Hồng, & Nguyễn Ngọc Phước. (2025). Ảnh hưởng của dopamine lên độc lực của vi khuẩn Streptococcus agalactiae trên cá rô phi (Oreochromis sp.). Tạp Chí điện tử Khoa học Và công nghệ nông nghiệp, 9(1), 4695–4705. https://doi.org/10.46826/huaf-jasat.v9n1y2025.1202
Chuyên mục
CHĂN NUÔI - THÚ Y- THỦY SẢN - ĐỘNG VẬT
Bản quyền @ 2017-2025 bởi Tạp chí điện tử Khoa học và công nghệ nông nghiệp
Tài liệu tham khảo
Nguyễn Đức Quỳnh Anh, Nguyễn Thị Huế Linh, Nguyễn Nam Quang, Huỳnh Văn Vì và Nguyễn Ngọc Phước. (2024). Ảnh hưởng của epinephrine lên độc lực vi khuẩn Vibrio harveyi trên tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei).Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp- Đại học Nông Lâm, Đại học Huế, 8(1), 4015-4026.
Nguyễn Ngọc Phước, Nguyễn Thị Huế Linh và Trần Thị Nhật Anh. (2019). Phân lập và xác định một số đặc điểm sinh học các chủng Streptococus agalactiae gây bệnh trên cá rô phi đỏ (Oreochromis sp.) nuôi tại Thừa Thiên Huế. Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp trường Đại học Nông Lâm, Đại học Huế, 3(3), 1591-1601.
Belay, T., Aviles, H., Vance, M., Fountain, K., & Sonnenfeld, G. (2003). Catecholamines and in vitro growth of pathogenic bacteria: enhancement of growth varies greatly among bacterial species. Life Sciences, 73(12), 1527-1535.
Cheng, W., Chieu, H. T., Ho, M. C., & Chen, J. C. (2006). Noradrenaline modulates the immunity of white shrimp Litopenaeus vannamei. Fish & shellfish immunology, 21(1), 11-19.
Cambronel, M., Tortuel, D., Biaggini, K., Maillot, O., Taupin, L., Réhel, K., Rincé, I., Muller, C., Hardouin, J., Feuilloley, M., Rodrigues, S., & Connil, N. (2019). Epinephrine affects motility, and increases adhesion, biofilm and virulence of Pseudomonas aeruginosa H103. Scientific reports, 9(1), 20203.
Gao, J., Xi, B., Chen, K., Song, R., Qin, T., Xie, J., & Pan, L. (2019). The stress hormone norepinephrine increases the growth and virulence of Aeromonas hydrophila. Microbiologyopen, 8(4), e00664.
Huang, D. B., & DuPont, H. L. (2005). Problem pathogens: extra-intestinal complications of Salmonella enterica serotype Typhi infection. The Lancet infectious diseases, 5(6), 341-348.
Istivan, T. S., & Coloe, P. J. (2006). Phospholipase A in Gram-negative bacteria and its role in pathogenesis. Microbiology, 152(Pt 5), 1263-1274.
Karavolos, M. H., Bulmer, D. M., Spencer, H., Rampioni, G., Schmalen, I., Baker, S., Pickard, D., Gray, J., Fookes, M., Winzer, K., Ivens, A., Dougan, G., Williams, P., & Khan, C. M. (2011). Salmonella Typhi sense host neuroendocrine stress hormones and release the toxin haemolysin E. EMBO Rep, 12(3), 252-258.
Kinney, K. S., Austin, C. E., Morton, D. S., & Sonnenfeld, G. (1999). Catecholamine enhancement of Aeromonas hydrophila growth. Microbial Pathogenesis, 26(2), 85-91.
Komal, W., Fatima, S., Minahal, Q., & Liaqat, R. (2024). Investigating the optimum stocking density of tilapia (Oreochromis niloticus) for intensive production focused to in-pond raceway system. Science Progress, 107(2), 00368504241257128.
Konto-Ghiorghi, Y., Mairey, E., Mallet, A., Duménil, G., Caliot, E., Trieu-Cuot, P., & Dramsi, S. (2009). Dual role for pilus in adherence to epithelial cells and biofilm formation in Streptococcus agalactiae. PLoS pathogens, 5(5), e1000422.
Kuo, C.M., Hsu, C.R., Lin, C.Y (1995). Hyperglycaemic effects of dopamine in tiger shrimp, Penaeus monodon. Aquaculture, 135(1-3), 161-172.
Lesouhaitier, O., Veron, W., Chapalain, A., Madi, A., Blier, A. S., Dagorn, A., Connil, N., Chevalier, S., Orange, N., & Feuilloley, M. (2009). Gram-negative bacterial sensors for eukaryotic signal molecules. Sensors (Basel), 9(9), 6967-6990.
Li, W., Su, Y. L., Mai, Y. Z., Li, Y. W., Mo, Z. Q., & Li, A. X. (2014). Comparative proteome analysis of two Streptococcus agalactiae strains from cultured tilapia with different virulence. Veterinary Microbiology, 170(1-2), 135-143.
Lyte, M., Freestone, P. P., Neal, C. P., Olson, B. A., Haigh, R. D., Bayston, R., & Williams, P. H. (2003). Stimulation of Staphylococcus epidermidis growth and biofilm formation by catecholamine inotropes. The Lancet, 361(9352), 130-135.
Nakano, M., Takahashi, A., Sakai, Y., Kawano, M., Harada, N., Mawatari, K., & Nakaya, Y. (2007). Catecholamine‐induced stimulation of growth in Vibrio species. Letters in applied microbiology, 44(6), 649-653.
Pande, G. S. J., Suong, N. T., Bossier, P., & Defoirdt, T. (2014). The catecholamine stress hormones norepinephrine and dopamine increase the virulence of pathogenic Vibrio anguillarum and Vibrio campbellii. FEMS microbiology ecology, 90(3), 761-769.
Phuoc, N. N., Linh, N. T. H., Crestani, C., & Zadoks, R. N. (2021). Effect of strain and enviromental conditions on the virulence of Streptococcus agalactiae (Group B Streptococcus; GBS) in red tilapia (Oreochromis sp.). Aquaculture, 534, 736256.
Sharaff, F., & Freestone, P. (2011). Microbial endocrinology. Central European Journal of Biology, 6, 685-694.
Reiche, E. M. V., Morimoto, H. K., & Nunes, S. M. V. (2005). Stress and depression-induced immune dysfunction: implications for the development and progression of cancer. International Review of Psychiatry, 17(6), 515-527.
Romalde, J. L., & Toranzo, A. E. (1993). Pathological activities of Yersinia ruckeri, the Enteric Redmouth (ERM) bacterium. FEMS microbiology letters, 112(3), 291-299.
Ramona, Y., Darmayasa, I. B. G., Widiantari, N. P., Shanti, N. N. B. D., Hani, N. L., Julyantoro, P. G. S., Oktariani, A.F., & Shetty, K. (2024). Catecholamines (dopamine) increases the virulence of Aeromonas hydrophila ATCC AH-1N, the causative agent of motile Aeromonas septicemia (MAS). 한국미생물· 생명공학회지, 52(2), 179-188.
Romana-Eguia, M. R. R., Eguia, R. V., & Pakingking Jr, R. V. (2020). Tilapia culture: The basics. Aquaculture Department, Southeast Asian Fisheries Development Center.
Sharaff, F., & Freestone, P. (2011). Microbial Endocrinology. Central European Journal of Biology, 6(5), 685-694.
Torabi Delshad, S., Soltanian, S., Sharifiyazdi, H., & Bossier, P. (2019). Effect of catecholamine stress hormones (dopamine and norepinephrine) on growth, swimming motility, biofilm formation and virulence factors of Yersinia ruckeri in vitro and an in vivo evaluation in rainbow trout. Journal of Fish Diseases, 42(4), 477-487.
Yang, Q., Anh, N. D.Q., Bossier, P., & Defoirdt, T. (2014). Norepinephrine and dopamine increase motility, biofilm formation, and virulence of Vibrio harveyi. Frontiers in microbiology, 5, 584.
Yang, Q., Zou, P., Cao, Z., Wang, Q., Fu, S., Xie, G., & Huang, J. (2021). QseC inhibition as a novel antivirulence strategy for the prevention of acute hepatopancreatic necrosis disease (AHPND)-causing Vibrio parahaemolyticus. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 10, 594652.
Nguyễn Ngọc Phước, Nguyễn Thị Huế Linh và Trần Thị Nhật Anh. (2019). Phân lập và xác định một số đặc điểm sinh học các chủng Streptococus agalactiae gây bệnh trên cá rô phi đỏ (Oreochromis sp.) nuôi tại Thừa Thiên Huế. Tạp chí Khoa học và Công nghệ Nông nghiệp trường Đại học Nông Lâm, Đại học Huế, 3(3), 1591-1601.
Belay, T., Aviles, H., Vance, M., Fountain, K., & Sonnenfeld, G. (2003). Catecholamines and in vitro growth of pathogenic bacteria: enhancement of growth varies greatly among bacterial species. Life Sciences, 73(12), 1527-1535.
Cheng, W., Chieu, H. T., Ho, M. C., & Chen, J. C. (2006). Noradrenaline modulates the immunity of white shrimp Litopenaeus vannamei. Fish & shellfish immunology, 21(1), 11-19.
Cambronel, M., Tortuel, D., Biaggini, K., Maillot, O., Taupin, L., Réhel, K., Rincé, I., Muller, C., Hardouin, J., Feuilloley, M., Rodrigues, S., & Connil, N. (2019). Epinephrine affects motility, and increases adhesion, biofilm and virulence of Pseudomonas aeruginosa H103. Scientific reports, 9(1), 20203.
Gao, J., Xi, B., Chen, K., Song, R., Qin, T., Xie, J., & Pan, L. (2019). The stress hormone norepinephrine increases the growth and virulence of Aeromonas hydrophila. Microbiologyopen, 8(4), e00664.
Huang, D. B., & DuPont, H. L. (2005). Problem pathogens: extra-intestinal complications of Salmonella enterica serotype Typhi infection. The Lancet infectious diseases, 5(6), 341-348.
Istivan, T. S., & Coloe, P. J. (2006). Phospholipase A in Gram-negative bacteria and its role in pathogenesis. Microbiology, 152(Pt 5), 1263-1274.
Karavolos, M. H., Bulmer, D. M., Spencer, H., Rampioni, G., Schmalen, I., Baker, S., Pickard, D., Gray, J., Fookes, M., Winzer, K., Ivens, A., Dougan, G., Williams, P., & Khan, C. M. (2011). Salmonella Typhi sense host neuroendocrine stress hormones and release the toxin haemolysin E. EMBO Rep, 12(3), 252-258.
Kinney, K. S., Austin, C. E., Morton, D. S., & Sonnenfeld, G. (1999). Catecholamine enhancement of Aeromonas hydrophila growth. Microbial Pathogenesis, 26(2), 85-91.
Komal, W., Fatima, S., Minahal, Q., & Liaqat, R. (2024). Investigating the optimum stocking density of tilapia (Oreochromis niloticus) for intensive production focused to in-pond raceway system. Science Progress, 107(2), 00368504241257128.
Konto-Ghiorghi, Y., Mairey, E., Mallet, A., Duménil, G., Caliot, E., Trieu-Cuot, P., & Dramsi, S. (2009). Dual role for pilus in adherence to epithelial cells and biofilm formation in Streptococcus agalactiae. PLoS pathogens, 5(5), e1000422.
Kuo, C.M., Hsu, C.R., Lin, C.Y (1995). Hyperglycaemic effects of dopamine in tiger shrimp, Penaeus monodon. Aquaculture, 135(1-3), 161-172.
Lesouhaitier, O., Veron, W., Chapalain, A., Madi, A., Blier, A. S., Dagorn, A., Connil, N., Chevalier, S., Orange, N., & Feuilloley, M. (2009). Gram-negative bacterial sensors for eukaryotic signal molecules. Sensors (Basel), 9(9), 6967-6990.
Li, W., Su, Y. L., Mai, Y. Z., Li, Y. W., Mo, Z. Q., & Li, A. X. (2014). Comparative proteome analysis of two Streptococcus agalactiae strains from cultured tilapia with different virulence. Veterinary Microbiology, 170(1-2), 135-143.
Lyte, M., Freestone, P. P., Neal, C. P., Olson, B. A., Haigh, R. D., Bayston, R., & Williams, P. H. (2003). Stimulation of Staphylococcus epidermidis growth and biofilm formation by catecholamine inotropes. The Lancet, 361(9352), 130-135.
Nakano, M., Takahashi, A., Sakai, Y., Kawano, M., Harada, N., Mawatari, K., & Nakaya, Y. (2007). Catecholamine‐induced stimulation of growth in Vibrio species. Letters in applied microbiology, 44(6), 649-653.
Pande, G. S. J., Suong, N. T., Bossier, P., & Defoirdt, T. (2014). The catecholamine stress hormones norepinephrine and dopamine increase the virulence of pathogenic Vibrio anguillarum and Vibrio campbellii. FEMS microbiology ecology, 90(3), 761-769.
Phuoc, N. N., Linh, N. T. H., Crestani, C., & Zadoks, R. N. (2021). Effect of strain and enviromental conditions on the virulence of Streptococcus agalactiae (Group B Streptococcus; GBS) in red tilapia (Oreochromis sp.). Aquaculture, 534, 736256.
Sharaff, F., & Freestone, P. (2011). Microbial endocrinology. Central European Journal of Biology, 6, 685-694.
Reiche, E. M. V., Morimoto, H. K., & Nunes, S. M. V. (2005). Stress and depression-induced immune dysfunction: implications for the development and progression of cancer. International Review of Psychiatry, 17(6), 515-527.
Romalde, J. L., & Toranzo, A. E. (1993). Pathological activities of Yersinia ruckeri, the Enteric Redmouth (ERM) bacterium. FEMS microbiology letters, 112(3), 291-299.
Ramona, Y., Darmayasa, I. B. G., Widiantari, N. P., Shanti, N. N. B. D., Hani, N. L., Julyantoro, P. G. S., Oktariani, A.F., & Shetty, K. (2024). Catecholamines (dopamine) increases the virulence of Aeromonas hydrophila ATCC AH-1N, the causative agent of motile Aeromonas septicemia (MAS). 한국미생물· 생명공학회지, 52(2), 179-188.
Romana-Eguia, M. R. R., Eguia, R. V., & Pakingking Jr, R. V. (2020). Tilapia culture: The basics. Aquaculture Department, Southeast Asian Fisheries Development Center.
Sharaff, F., & Freestone, P. (2011). Microbial Endocrinology. Central European Journal of Biology, 6(5), 685-694.
Torabi Delshad, S., Soltanian, S., Sharifiyazdi, H., & Bossier, P. (2019). Effect of catecholamine stress hormones (dopamine and norepinephrine) on growth, swimming motility, biofilm formation and virulence factors of Yersinia ruckeri in vitro and an in vivo evaluation in rainbow trout. Journal of Fish Diseases, 42(4), 477-487.
Yang, Q., Anh, N. D.Q., Bossier, P., & Defoirdt, T. (2014). Norepinephrine and dopamine increase motility, biofilm formation, and virulence of Vibrio harveyi. Frontiers in microbiology, 5, 584.
Yang, Q., Zou, P., Cao, Z., Wang, Q., Fu, S., Xie, G., & Huang, J. (2021). QseC inhibition as a novel antivirulence strategy for the prevention of acute hepatopancreatic necrosis disease (AHPND)-causing Vibrio parahaemolyticus. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology, 10, 594652.