##plugins.themes.huaf_theme.article.main##
Tóm tắt
Bệnh xuất huyết do vi khuẩn Vibrio alginolyticus là một trong những thách thức lớn nhất cho nghề nuôi cá Hồng mỹ (Sciaenops ocellatus) ở Việt Nam. Việc phát triển loại vaccine có thể sử dụng qua đường thức ăn là cần thiết để giảm thiểu việc sử dụng kháng sinh và thiệt hại trong nghề nuôi cá. Nghiên cứu được thực hiện nhằm phát triển vaccine qua đường thức ăn, chỉ giải phóng vaccine tại vị trí hoạt động, tức là trong đường tiêu hóa của cá. Khảo sát pH trong hệ thống tiêu hoá ở cá Hồng mỹ trước và sau khi cho ăn 30 phút cho thấy pH thay đổi rõ rệt từ pH có giá trị trung tính ở miệng, giảm đến acid rất thấp ở dạ dày, sau đó tăng trở lại trung tính và hơi kiềm ở đường ruột. Nghiên cứu đã tiến hành bọc V. alginolyticus bất hoạt bằng formalin trong các vi hạt Eudragit E100. Việc tiếp xúc với môi trường acid mô phỏng điều kiện dạ dày cá cho thấy kích thước của các vi hạt chứa vaccine giảm nhanh chóng, phản ánh sự phân giải của vi hạt và giải phóng vaccine. Vi hạt không giải phóng vaccine ở điều kiện pH ≥ 6. Kết quả này cho thấy tiềm năng của việc ứng dụng Eudragit E100 vào việc phát triển vaccine qua đường thức ăn để phòng bệnh do vi khuẩn V. alginolyticus gây ra trên cá Hồng mỹ.
##plugins.themes.huaf_theme.article.details##
Cách trích dẫn
Nguyễn Ngọc Phước, Nguyễn Nam Quang, Nguyễn Đức Quỳnh Anh, Nguyễn Thị Huế Linh, & Nguyễn Thị Xuân Hồng. (2025). Nghiên cứu sử dụng vi hạt eudragit e100 làm chất bọc vaccine Vibrio alginolyticus bất hoạt sử dụng qua đường thức ăn để phòng bệnh xuất huyết cho cá hồng mỹ (Sciaenops ocellatus). Tạp Chí điện tử Khoa học Và công nghệ nông nghiệp, 9(1), 4706–4716. https://doi.org/10.46826/huaf-jasat.v9n1y2025.1224
Chuyên mục
CHĂN NUÔI - THÚ Y- THỦY SẢN - ĐỘNG VẬT
Bản quyền @ 2017-2025 bởi Tạp chí điện tử Khoa học và công nghệ nông nghiệp
Tài liệu tham khảo
Đặng Thanh Long, Nguyễn Thái Hoàng, Hoàng Thị Kim Hồng, Lê Lý Thùy Trâm, Phạm Thị Hải Yến, Huỳnh Văn Chương, Nguyễn Thị Quỳnh Trang và Võ Văn Hiệp. (2019). Phân lập và tạo dòng gen Thermolabile hemolysin của vi khuẩn Vibrio từ cá hồng Mỹ Sciaenops ocellatus ở Thừa Thiên Huế. Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Khoa Học Tự Nhiên, 128(1E), 5–14.
Phạm Thị Hải Yến, Nguyễn Duy Quỳnh Trâm, Nguyễn Anh Hiếu và Nguyễn Quang Linh. (2021). Khả năng kháng khuẩn của cao chiết Diệp hạ châu (Phyllanthus amarus) đối với vi khuẩn Vibrio alginolyticus gây bệnh xuất huyết trên cá Hồng mỹ (Sciaenops ocellatus). Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Kỹ Thuật & Công Nghệ, 130(2A), 67-79.
Phạm Thị Hải Yến, Trần Quang Khánh Vân, Nguyễn Khoa Huy Sơn và Nguyễn Duy Quỳnh Trâm. (2019). Hiện trạng nuôi cá lồng và tình hình xuất hiện bệnh trên một số đối tượng cá nước lợ – mặn có giá trị kinh tế nuôi tại Thừa Thiên Huế. Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển nông thôn, 23, 50–57.
Thủ tướng Chính phủ. (2018). Quyết định số 50/2018/QĐ-TTg ngày 13 tháng 12 năm 2018 của Thủ tướng Chính phủ ban hành Quy định đối tượng Thủy sản nuôi chủ lực. Khai thác từ https://vanban.chinhphu.vn/default.aspx?pageid=27160&docid=195564
Assefa, A., & Abunna, F. (2018). Maintenance of fish health in aquaculture: review of epidemiological approaches for prevention and control of infectious disease of fish. Veterinary medicine international, 2018(1), 5432497.
Ayukekbong, J. A., Ntemgwa, M., & Atabe, A. N. (2017). The threat of antimicrobial resistance in developing countries: causes and control strategies. Antimicrobial Resistance & Infection Control, 6, 1-8.
Bashir, S., Phuoc, N. N., Herath, T., Basit, A., Zadoks, R. N., & Murdan, S. (2023). An oral pH-responsive Streptococcus agalactiae vaccine formulation provides protective immunity to pathogen challenge in tilapia: A proof-of-concept study. Plos one, 18(3), e0278277.
Cao, J., Zhang, J., Ma, L., Li, L., Zhang, W., & Li, J. (2018). Identification of fish source Vibrio alginolyticus and evaluation of its bacterial ghosts vaccine immune effects. Microbiologyopen, 7(3), e00576.
Damir, K., Irena, V. S., Damir, V., & Emin, T. (2013). Occurrence, characterization and antimicrobial susceptibility of Vibrio alginolyticus in the Eastern Adriatic Sea. Marine pollution bulletin, 75(1-2), 46-52.
Dubey, S., Avadhani, K., Mutalik, S., Sivadasan, S. M., Maiti, B., Paul, J., Girisha, S. K., Venugopal, M. N., Mutoloki, S., Evensen, O., Karunasaga, I., & Munang’andu, H. M. (2016). Aeromonas hydrophila OmpW PLGA nanoparticle oral vaccine shows a dose-dependent protective immunity in rohu (Labeo rohita). Vaccines, 4(2), 21.
Food and Drug Administration, U.S. (2021). Inactive ingredient search for approved drug products.
Gillespie, S., & van den Bold, M. (2017). Agriculture, food systems, and nutrition: meeting the challenge. Global Challenges, 1(3), 1600002.
Halimi, M., Alishahi, M., Abbaspour, M. R., Ghorbanpoor, M., & Tabandeh, M. R. (2018). Efficacy of a Eudragit L30D-55 encapsulated oral vaccine containing inactivated bacteria (Lactococcus garvieae/Streptococcus iniae) in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish & shellfish immunology, 81, 430-437.
Kitiyodom, S., Kaewmalun, S., Nittayasut, N., Suktham, K., Surassmo, S., Namdee, K., Rodkhun, C., Pirarat, N., & Yata, T. (2019). The potential of mucoadhesive polymer in enhancing efficacy of direct immersion vaccination against Flavobacterium columnare infection in tilapia. Fish & Shellfish Immunology, 86, 635-640.
Lee, P. T., Yamamoto, F. Y., Low, C. F., Loh, J. Y., & Chong, C. M. (2021). Gut immune system and the implications of oral-administered immunoprophylaxis in finfish aquaculture. Frontiers in Immunology, 12, 773193.
Linares, V., Yarce, C. J., Echeverri, J. D., Galeano, E., & Salamanca, C. H. (2019). Relationship between degree of polymeric ionisation and hydrolytic degradation of Eudragit® E polymers under extreme acid conditions. Polymers, 11(6), 1010.
Miccoli, A., Manni, M., Picchietti, S., & Scapigliati, G. (2021). State-of-the-art vaccine research for aquaculture use: The case of three economically relevant fish species. Vaccines, 9(2), 140.
Mohamad, N., Amal, M. N. A., Yasin, I. S. M., Saad, M. Z., Nasruddin, N. S., Al-saari, N., Mino, S., & Sawabe, T. (2019). Vibriosis in cultured marine fishes: a review. Aquaculture, 512, 734289.
Munang’andu, H. M., Paul, J., & Evensen, Ø. (2016). An overview of vaccination strategies and antigen delivery systems for Streptococcus agalactiae vaccines in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Vaccines, 4(4), 48.
Near, T. J., Eytan, R. I., Dornburg, A., Kuhn, K. L., Moore, J. A., Davis, M. P., ... & Smith, W. L. (2012). Resolution of ray-finned fish phylogeny and timing of diversification. Proceedings of the National Academy of Sciences, 109(34), 13698-13703.
Payne, A. I. (1978). Gut pH and digestive strategies in estuarine grey mullet (Mugilidae) and tilapia (Cichlidae). Journal of Fish Biology, 13(5), 627-629.
Reverter, M., Sarter, S., Caruso, D., Avarre, J. C., Combe, M., Pepey, E., Pouyaud, L., Vega-Heredia, S. de Vẻda, H., & Gozlan, R. E. (2020). Aquaculture at the crossroads of global warming and antimicrobial resistance. Nature communications, 11(1), 1870.
Rombout, J. H. W. M., Van den Berg, A. A., Van den Berg, C. T. G. A., Witte, P., & Egberts, E. (1989). Immunological importance of the second gut segment of carp. III. Systemic and/or mucosal immune responses after immunization with soluble or particulate antigen. Journal of Fish Biology, 35(2), 179-186.
Rombout, J. W., Blok, L. J., Lamers, C. H., & Egberts, E. (1986). Immunization of carp (Cyprinus carpio) with a Vibrio anguillarum bacterin: indications for a common mucosal immune system. Developmental & Comparative Immunology, 10(3), 341-351.
Rosca, I. D., Watari, F., & Uo, M. (2004). Microparticle formation and its mechanism in single and double emulsion solvent evaporation. Journal of controlled release, 99(2), 271-280.
Sadok, K., Mejdi, S., Nourhen, S., & Amina, B. (2013). Phenotypic characterization and RAPD fingerprinting of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio alginolyticus isolated during Tunisian fish farm outbreaks. Folia microbiologica, 58, 17-26.
Yen, P. T. H., Linh, N. Q., & Tram, N. D. Q. (2021). The identification and determination of toxin genes of Vibrio strains causing hemorrhagic disease on red drum (Sciaenops ocellatus) using PCR. AMB Express, 11(1), 4.
Zhang, M., & Sun, L. (2011). The tissue factor pathway inhibitor 1 of Sciaenops ocellatus possesses antimicrobial activity and is involved in the immune response against bacterial infection. Developmental & Comparative Immunology, 35(3), 247-252.
Zhou, J., Yu, J., & Chu, Q. (2024). Comparative transcriptome analysis reveals potential regulatory mechanisms of genes and immune pathways following Vibrio harveyi infection in red drum (Sciaenops ocellatus). Fish & Shellfish Immunology, 146, 109386.
Phạm Thị Hải Yến, Nguyễn Duy Quỳnh Trâm, Nguyễn Anh Hiếu và Nguyễn Quang Linh. (2021). Khả năng kháng khuẩn của cao chiết Diệp hạ châu (Phyllanthus amarus) đối với vi khuẩn Vibrio alginolyticus gây bệnh xuất huyết trên cá Hồng mỹ (Sciaenops ocellatus). Tạp chí Khoa học Đại học Huế: Kỹ Thuật & Công Nghệ, 130(2A), 67-79.
Phạm Thị Hải Yến, Trần Quang Khánh Vân, Nguyễn Khoa Huy Sơn và Nguyễn Duy Quỳnh Trâm. (2019). Hiện trạng nuôi cá lồng và tình hình xuất hiện bệnh trên một số đối tượng cá nước lợ – mặn có giá trị kinh tế nuôi tại Thừa Thiên Huế. Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển nông thôn, 23, 50–57.
Thủ tướng Chính phủ. (2018). Quyết định số 50/2018/QĐ-TTg ngày 13 tháng 12 năm 2018 của Thủ tướng Chính phủ ban hành Quy định đối tượng Thủy sản nuôi chủ lực. Khai thác từ https://vanban.chinhphu.vn/default.aspx?pageid=27160&docid=195564
Assefa, A., & Abunna, F. (2018). Maintenance of fish health in aquaculture: review of epidemiological approaches for prevention and control of infectious disease of fish. Veterinary medicine international, 2018(1), 5432497.
Ayukekbong, J. A., Ntemgwa, M., & Atabe, A. N. (2017). The threat of antimicrobial resistance in developing countries: causes and control strategies. Antimicrobial Resistance & Infection Control, 6, 1-8.
Bashir, S., Phuoc, N. N., Herath, T., Basit, A., Zadoks, R. N., & Murdan, S. (2023). An oral pH-responsive Streptococcus agalactiae vaccine formulation provides protective immunity to pathogen challenge in tilapia: A proof-of-concept study. Plos one, 18(3), e0278277.
Cao, J., Zhang, J., Ma, L., Li, L., Zhang, W., & Li, J. (2018). Identification of fish source Vibrio alginolyticus and evaluation of its bacterial ghosts vaccine immune effects. Microbiologyopen, 7(3), e00576.
Damir, K., Irena, V. S., Damir, V., & Emin, T. (2013). Occurrence, characterization and antimicrobial susceptibility of Vibrio alginolyticus in the Eastern Adriatic Sea. Marine pollution bulletin, 75(1-2), 46-52.
Dubey, S., Avadhani, K., Mutalik, S., Sivadasan, S. M., Maiti, B., Paul, J., Girisha, S. K., Venugopal, M. N., Mutoloki, S., Evensen, O., Karunasaga, I., & Munang’andu, H. M. (2016). Aeromonas hydrophila OmpW PLGA nanoparticle oral vaccine shows a dose-dependent protective immunity in rohu (Labeo rohita). Vaccines, 4(2), 21.
Food and Drug Administration, U.S. (2021). Inactive ingredient search for approved drug products.
Gillespie, S., & van den Bold, M. (2017). Agriculture, food systems, and nutrition: meeting the challenge. Global Challenges, 1(3), 1600002.
Halimi, M., Alishahi, M., Abbaspour, M. R., Ghorbanpoor, M., & Tabandeh, M. R. (2018). Efficacy of a Eudragit L30D-55 encapsulated oral vaccine containing inactivated bacteria (Lactococcus garvieae/Streptococcus iniae) in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish & shellfish immunology, 81, 430-437.
Kitiyodom, S., Kaewmalun, S., Nittayasut, N., Suktham, K., Surassmo, S., Namdee, K., Rodkhun, C., Pirarat, N., & Yata, T. (2019). The potential of mucoadhesive polymer in enhancing efficacy of direct immersion vaccination against Flavobacterium columnare infection in tilapia. Fish & Shellfish Immunology, 86, 635-640.
Lee, P. T., Yamamoto, F. Y., Low, C. F., Loh, J. Y., & Chong, C. M. (2021). Gut immune system and the implications of oral-administered immunoprophylaxis in finfish aquaculture. Frontiers in Immunology, 12, 773193.
Linares, V., Yarce, C. J., Echeverri, J. D., Galeano, E., & Salamanca, C. H. (2019). Relationship between degree of polymeric ionisation and hydrolytic degradation of Eudragit® E polymers under extreme acid conditions. Polymers, 11(6), 1010.
Miccoli, A., Manni, M., Picchietti, S., & Scapigliati, G. (2021). State-of-the-art vaccine research for aquaculture use: The case of three economically relevant fish species. Vaccines, 9(2), 140.
Mohamad, N., Amal, M. N. A., Yasin, I. S. M., Saad, M. Z., Nasruddin, N. S., Al-saari, N., Mino, S., & Sawabe, T. (2019). Vibriosis in cultured marine fishes: a review. Aquaculture, 512, 734289.
Munang’andu, H. M., Paul, J., & Evensen, Ø. (2016). An overview of vaccination strategies and antigen delivery systems for Streptococcus agalactiae vaccines in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Vaccines, 4(4), 48.
Near, T. J., Eytan, R. I., Dornburg, A., Kuhn, K. L., Moore, J. A., Davis, M. P., ... & Smith, W. L. (2012). Resolution of ray-finned fish phylogeny and timing of diversification. Proceedings of the National Academy of Sciences, 109(34), 13698-13703.
Payne, A. I. (1978). Gut pH and digestive strategies in estuarine grey mullet (Mugilidae) and tilapia (Cichlidae). Journal of Fish Biology, 13(5), 627-629.
Reverter, M., Sarter, S., Caruso, D., Avarre, J. C., Combe, M., Pepey, E., Pouyaud, L., Vega-Heredia, S. de Vẻda, H., & Gozlan, R. E. (2020). Aquaculture at the crossroads of global warming and antimicrobial resistance. Nature communications, 11(1), 1870.
Rombout, J. H. W. M., Van den Berg, A. A., Van den Berg, C. T. G. A., Witte, P., & Egberts, E. (1989). Immunological importance of the second gut segment of carp. III. Systemic and/or mucosal immune responses after immunization with soluble or particulate antigen. Journal of Fish Biology, 35(2), 179-186.
Rombout, J. W., Blok, L. J., Lamers, C. H., & Egberts, E. (1986). Immunization of carp (Cyprinus carpio) with a Vibrio anguillarum bacterin: indications for a common mucosal immune system. Developmental & Comparative Immunology, 10(3), 341-351.
Rosca, I. D., Watari, F., & Uo, M. (2004). Microparticle formation and its mechanism in single and double emulsion solvent evaporation. Journal of controlled release, 99(2), 271-280.
Sadok, K., Mejdi, S., Nourhen, S., & Amina, B. (2013). Phenotypic characterization and RAPD fingerprinting of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio alginolyticus isolated during Tunisian fish farm outbreaks. Folia microbiologica, 58, 17-26.
Yen, P. T. H., Linh, N. Q., & Tram, N. D. Q. (2021). The identification and determination of toxin genes of Vibrio strains causing hemorrhagic disease on red drum (Sciaenops ocellatus) using PCR. AMB Express, 11(1), 4.
Zhang, M., & Sun, L. (2011). The tissue factor pathway inhibitor 1 of Sciaenops ocellatus possesses antimicrobial activity and is involved in the immune response against bacterial infection. Developmental & Comparative Immunology, 35(3), 247-252.
Zhou, J., Yu, J., & Chu, Q. (2024). Comparative transcriptome analysis reveals potential regulatory mechanisms of genes and immune pathways following Vibrio harveyi infection in red drum (Sciaenops ocellatus). Fish & Shellfish Immunology, 146, 109386.